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目的 明确体外导入EKM基因的实验猕猴感染SHIV-KB9后,病毒复制和免疫反应情况,为基因治疗AIDS提供实验依据.方法 用血清学方法筛选出无SIV、STLV、SRV/D和B病毒感染的猕猴7只,实验当天回输自体储备血75 ml,同时采集猴外周血75 ml进行CD4+T细胞分离培养,并导入EKM基因,培养结束后收获细胞,静脉回输猴体后再进行SHIV-KB9感染.采用流式细胞术、血常规检测、病毒栽量检测和基因拷贝数检测的方法确定导入基因后的实验猕猴感染SHIV-KB9后体内病毒复制和免疫损伤情况.结果 导入基因和回输细胞的实验猕猴其血浆病毒载量峰值都与已报道的推迟14 d出现,比模型对照组推迟11 d出现,血浆病毒载量峰值均比模型对照组峰值低.流式细胞术结果表明其CD4+T细胞计数也稳定在一定水平,CD4/CD8比值未出现明显倒置.实验组猕猴在试验结束时均未发展为猴AIDS.结论 自体回输导入EKM基因的CD4+T细胞的猕猴AIDS模型其血浆病毒载量峰值与模型对照组峰值比较有迟后作用,且低于模型对照组峰值,与回输细胞的实验对照组没有明显区别,其更确定的效果还有待进一步的研究.

作者:陆彩霞;高家红;江勤芳;孙晓梅;代解杰

来源:实验动物与比较医学 2011 年 31卷 1期

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作者:
陆彩霞;高家红;江勤芳;孙晓梅;代解杰
来源:
实验动物与比较医学 2011 年 31卷 1期
标签:
EKM基因 艾滋病 实验猕猴 SHIV-KB9
目的 明确体外导入EKM基因的实验猕猴感染SHIV-KB9后,病毒复制和免疫反应情况,为基因治疗AIDS提供实验依据.方法 用血清学方法筛选出无SIV、STLV、SRV/D和B病毒感染的猕猴7只,实验当天回输自体储备血75 ml,同时采集猴外周血75 ml进行CD4+T细胞分离培养,并导入EKM基因,培养结束后收获细胞,静脉回输猴体后再进行SHIV-KB9感染.采用流式细胞术、血常规检测、病毒栽量检测和基因拷贝数检测的方法确定导入基因后的实验猕猴感染SHIV-KB9后体内病毒复制和免疫损伤情况.结果 导入基因和回输细胞的实验猕猴其血浆病毒载量峰值都与已报道的推迟14 d出现,比模型对照组推迟11 d出现,血浆病毒载量峰值均比模型对照组峰值低.流式细胞术结果表明其CD4+T细胞计数也稳定在一定水平,CD4/CD8比值未出现明显倒置.实验组猕猴在试验结束时均未发展为猴AIDS.结论 自体回输导入EKM基因的CD4+T细胞的猕猴AIDS模型其血浆病毒载量峰值与模型对照组峰值比较有迟后作用,且低于模型对照组峰值,与回输细胞的实验对照组没有明显区别,其更确定的效果还有待进一步的研究.