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目的探讨微环境在肝癌多药耐药(MDR)表型形成中的作用,并初探其作用机制,为逆转肝癌耐药提供有效的新的分子靶点.方法模拟肝癌体内生长的局部微环境,使HepG2细胞分别在缺氧、低糖的微环境下生长或稳定整合HBX基因.应用荧光定量聚合酶链反应(PCR)技术和Western blot技术分别检测这些局部微环境因素作用下的HepG2细胞内多药耐药相关基因mdr1、肺耐药相关蛋白基因(LRP)、多药耐药相关蛋白基因(MRP1)和缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)的mRNA和蛋白水平的表达.同时运用免疫细胞化学技术检测肝癌耐药细胞株中HIF-1α蛋白的表达,以及检测转染了HIF-1α质粒的HepG2细胞中上述相关多药耐药基因的表达.结果在缺氧、低糖环境下生长或稳定整合了HBX基因的HepG2细胞均不同程度地高表达多药耐药相关基因和HIF-1α;在肝癌耐药细胞株中HIF-1α蛋白高表达;稳定转染了HIF-1α质粒的HepG2细胞显著高表达多药耐药相关基因.结论肝癌生长的微环境可通过核转录因子HIF-1α调控多药耐药相关基因的表达,从而诱导肝癌多药耐药表型的形成;HIF-1α有望成为逆转肝癌耐药的新的分子靶点.

作者:朱虹;陈孝平;罗顺峰;关剑;张万广;张必翔

来源:中华实验外科杂志 2005 年 22卷 11期

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作者:
朱虹;陈孝平;罗顺峰;关剑;张万广;张必翔
来源:
中华实验外科杂志 2005 年 22卷 11期
标签:
癌,肝细胞 多药耐药 缺氧诱导因子1α
目的探讨微环境在肝癌多药耐药(MDR)表型形成中的作用,并初探其作用机制,为逆转肝癌耐药提供有效的新的分子靶点.方法模拟肝癌体内生长的局部微环境,使HepG2细胞分别在缺氧、低糖的微环境下生长或稳定整合HBX基因.应用荧光定量聚合酶链反应(PCR)技术和Western blot技术分别检测这些局部微环境因素作用下的HepG2细胞内多药耐药相关基因mdr1、肺耐药相关蛋白基因(LRP)、多药耐药相关蛋白基因(MRP1)和缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)的mRNA和蛋白水平的表达.同时运用免疫细胞化学技术检测肝癌耐药细胞株中HIF-1α蛋白的表达,以及检测转染了HIF-1α质粒的HepG2细胞中上述相关多药耐药基因的表达.结果在缺氧、低糖环境下生长或稳定整合了HBX基因的HepG2细胞均不同程度地高表达多药耐药相关基因和HIF-1α;在肝癌耐药细胞株中HIF-1α蛋白高表达;稳定转染了HIF-1α质粒的HepG2细胞显著高表达多药耐药相关基因.结论肝癌生长的微环境可通过核转录因子HIF-1α调控多药耐药相关基因的表达,从而诱导肝癌多药耐药表型的形成;HIF-1α有望成为逆转肝癌耐药的新的分子靶点.