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目的:本实验结合液氮深低温冻存技术与地塞米松预处理方法,研究其对猪角膜免疫原性影响情况及可能机制。<br>  方法:选择新鲜猪角膜,以13 mm直径环钻制取角膜标本,依次放入四种冷冻保护液中冷平衡,“简化四步法”程序降温后放入液氮中保存,使用前40℃水浴复温。地塞米松作用组以同法制备植片,前三步冷平衡同前,最后分别放入含0.01,0.03,0.05 mg/mL地塞米松保护液中4℃孵育18h,再程序降温液氮冻存。 BALB/c小鼠50只,随机分为阳性对照组(新鲜组)、程序冻存组、地塞米松程序冻存组Ⅰ、地塞米松程序冻存组Ⅱ和地塞米松程序冻存组Ⅲ,每组10只。各组角膜植入到BALB/c小鼠背部皮下,术后14 d取出,做石蜡包埋, HE染色、CD25和FasL免疫组化染色,光镜观察。<br>  结果:术后14 d剖取角膜植片,见植片与周围组织粘连,植片明显肿胀,半透明,色微黄。 HE染色结果:新鲜组角膜植片全层有大量淋巴细胞浸润;程序冻存组角膜浸润细胞较新鲜组减少,多位于内皮和上皮层分布;地塞米松作用各组细胞浸润数最少。免疫组化显示:新鲜组植片CD25+和FasL+浸润细胞数最多,与程序冻存组、各地塞米松作用组比较有明显统计学差异。程序冻存组CD25+和FasL+浸润细胞数多于各地塞米松作用组,比较有显

作者:刘芳;熊国平;王晶;王立;彭超;黄燕然

来源:国际眼科杂志 2014 年 2期

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作者:
刘芳;熊国平;王晶;王立;彭超;黄燕然
来源:
国际眼科杂志 2014 年 2期
标签:
角膜移植 免疫原性 深低温冻存 地塞米松 corneal transplantation immunogenicity cryopreservation dexamethasone
目的:本实验结合液氮深低温冻存技术与地塞米松预处理方法,研究其对猪角膜免疫原性影响情况及可能机制。<br>  方法:选择新鲜猪角膜,以13 mm直径环钻制取角膜标本,依次放入四种冷冻保护液中冷平衡,“简化四步法”程序降温后放入液氮中保存,使用前40℃水浴复温。地塞米松作用组以同法制备植片,前三步冷平衡同前,最后分别放入含0.01,0.03,0.05 mg/mL地塞米松保护液中4℃孵育18h,再程序降温液氮冻存。 BALB/c小鼠50只,随机分为阳性对照组(新鲜组)、程序冻存组、地塞米松程序冻存组Ⅰ、地塞米松程序冻存组Ⅱ和地塞米松程序冻存组Ⅲ,每组10只。各组角膜植入到BALB/c小鼠背部皮下,术后14 d取出,做石蜡包埋, HE染色、CD25和FasL免疫组化染色,光镜观察。<br>  结果:术后14 d剖取角膜植片,见植片与周围组织粘连,植片明显肿胀,半透明,色微黄。 HE染色结果:新鲜组角膜植片全层有大量淋巴细胞浸润;程序冻存组角膜浸润细胞较新鲜组减少,多位于内皮和上皮层分布;地塞米松作用各组细胞浸润数最少。免疫组化显示:新鲜组植片CD25+和FasL+浸润细胞数最多,与程序冻存组、各地塞米松作用组比较有明显统计学差异。程序冻存组CD25+和FasL+浸润细胞数多于各地塞米松作用组,比较有显