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将通过In-fution方法构建的pET32a-pfu质粒与可以促进可溶性表达的HG-PGR07质粒一起转入大肠杆菌BL21(DE3)共表达,以pET32a-pfu单独在BL21(DE3)中表达作为对照.用热变性和(NH_4)_2SO_4沉淀去除部分杂蛋白,再经Ni-NAT亲和层析柱纯化分离pfu蛋白,SDS-PAGE检测结果表明目的蛋白大小约为90 kD,与预计的分子量大小一致.最后对其酶活性测定结果表明分子伴侣能够促进pfu基因表达,并能够提高酶活性.

作者:张海军;杨君;刘晓光;胡向阳

来源:云南植物研究 2009 年 31卷 6期

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作者:
张海军;杨君;刘晓光;胡向阳
来源:
云南植物研究 2009 年 31卷 6期
标签:
Pfu 分子伴侣 基因克隆 载体构建 原核表达 蛋白纯化 酶活测定 Pfu Molecular chaperone Clonging Construction of a Expression Vector Prokaryotic expression Protein purification Enzyme activity assay
将通过In-fution方法构建的pET32a-pfu质粒与可以促进可溶性表达的HG-PGR07质粒一起转入大肠杆菌BL21(DE3)共表达,以pET32a-pfu单独在BL21(DE3)中表达作为对照.用热变性和(NH_4)_2SO_4沉淀去除部分杂蛋白,再经Ni-NAT亲和层析柱纯化分离pfu蛋白,SDS-PAGE检测结果表明目的蛋白大小约为90 kD,与预计的分子量大小一致.最后对其酶活性测定结果表明分子伴侣能够促进pfu基因表达,并能够提高酶活性.